Giờ làm việc: T2 - T6 | 08:00 - 17:00HOTLINE: 0867 95 7568
Bài kỹ thuật

EHP phóng ống cực thế nào? Bằng chứng từ phòng thí nghiệm và điều người nuôi áp dụng được

Bào tử EHP xâm nhập tế bào gan tụy tôm bằng cách phóng ống cực. Các nghiên cứu ở Thái Lan cho thấy cấp đông −20 °C, gia nhiệt 75 °C, chlorine, thuốc tím hay để nước nghỉ 10 ngày làm bào tử mất khả năng phóng; formalin 200 ppm thì không triệt để.

Bài kỹ thuậtTôm10 tháng 11, 2026
Bấm để nghe tóm tắt bằng giọng đọc AI
Nội dung bài viết
EHP phóng ống cực thế nào? Bằng chứng từ phòng thí nghiệm và điều người nuôi áp dụng được

Bào tử EHP không tự chui vào tế bào tôm. Nó phóng ra một ống cực rất mảnh, chọc vào tế bào gan tụy rồi "tiêm" mầm bệnh vào trong. Các nhóm nghiên cứu ở Thái Lan đã đo được hoạt động này ở EHP và dùng chính nó để tìm cách làm bào tử mất khả năng gây bệnh.

Ống cực: "kim tiêm" của bào tử

EHP (Enterocytozoon hepatopenaei) thuộc nhóm vi bào tử trùng. Bào tử hình bầu dục, dài chưa tới 2 µm. Dưới kính hiển vi điện tử, bên trong mỗi bào tử có một sợi cực cuộn 5–6 vòng, gắn vào đĩa neo ở đầu trước (Tourtip và cs., 2009).

Mô hình 3D cấu tạo bào tử EHP cắt bỏ một phần tư: vỏ ngoài, vỏ trong, đĩa neo, sợi cực cuộn 5–6 vòng, nhân, không bào sau
Cấu tạo bào tử EHP trước khi phóng: sợi cực còn cuộn bên trong (mô hình 3D của Thần Vương theo Tourtip và cs., 2009).

Khi bào tử được kích hoạt, sợi cực lộn ra ngoài thành một ống rỗng, như ngón găng tay bị lộn trái. Không bào ở đuôi bào tử phồng lên, đẩy khối mầm bệnh về phía ống. Đầu ống chọc vào tế bào biểu mô ống gan tụy, và khối mầm bệnh (gồm cả nhân) đi qua lòng ống vào trong tế bào. Tại đó EHP nhân lên, tạo bào tử mới, rồi bào tử theo phân ra ngoài.

Mô hình 3D bào tử EHP đang phóng ống cực, đầu ống chọc qua lớp vi nhung mao vào tế bào gan tụy, có đánh số 8 bộ phận
Khoảnh khắc phóng ống cực (mô hình minh họa, không theo tỉ lệ). Đồ họa 3D: Thần Vương.

Tôm nhiễm EHP qua đường miệng, khi ăn phải bào tử. Điều này đã được chứng minh bằng thí nghiệm cho tôm khỏe ăn mô tôm nhiễm (Tangprasittipap và cs., 2013) và nuôi tôm trong nước có bào tử (Pattarayingsakul và cs., 2022).

Sơ đồ 4 bước: tôm ăn phải bào tử; bào tử phóng ống cực; tiêm mầm bệnh vào tế bào gan tụy; EHP nhân lên và theo phân phát tán
EHP vào tế bào gan tụy qua 4 bước. Nhãn xanh: bước đã có bằng chứng riêng cho EHP.

Bằng chứng: EHP phóng ống cực thật

  • Đo được trong ống nghiệm (2018). Nhóm của Đại học Mahidol (Thái Lan) tách được bào tử EHP còn sống từ gan tụy tôm bệnh, rồi nhuộm màu để đếm bào tử đã phóng và chưa phóng ống cực. Bào tử còn phóng được tức là còn khả năng gây bệnh, nên phép đếm này trở thành thước đo bào tử còn sống.
  • Tỷ lệ phóng tự nhiên. Trong một thử nghiệm năm 2020 dùng cùng phương pháp, 70–77% bào tử nhóm đối chứng phóng ống cực sau 2 giờ trong nước cất ở khoảng 25 °C.
  • Protein của ống cực (2024). Nhóm nghiên cứu xác định protein EhPTP2 nằm trong ống cực của EHP. Tiêm cho tôm đoạn RNA làm im gen này thì lượng EHP trong tôm giảm rõ và giảm lây sang tôm khỏe nuôi chung. Đây là thí nghiệm tiêm từng con, chưa phải biện pháp dùng ngoài ao.
Tín hiệu nào trong ruột tôm kích hoạt bào tử EHP phóng ống cực thì các nghiên cứu hiện có chưa xác định. Phần cơ chế chung ở trên là của nhóm vi bào tử trùng.

Điều gì làm bào tử mất khả năng phóng ống cực

Vì phóng ống cực là bước bắt buộc để gây bệnh, các nhà khoa học dùng phép thử này để kiểm cách nào làm bào tử mất hoạt tính:

Cách xử lýKết quảNăm
Cấp đông −20 °C, ít nhất 2 giờBào tử không còn phóng ống cực2018
Gia nhiệt 75 °C trong 45–60 giâyKhông còn phóng; tôm ăn (bơm qua miệng) bào tử đã gia nhiệt không nhiễm2021
Thuốc tím (KMnO₄) 15 ppm, 15 phútChặn hoàn toàn2018
Chlorine (loại 65% hoạt tính) 40 ppm trong 15 phút, hoặc 10 ppm trong 24 giờChặn hoàn toàn2018
Cồn 20%, 15 phútChặn hoàn toàn2018
Formalin 200 ppmChỉ giảm tối đa 95,33% — không triệt để2018
Nước nuôi có bào tử, xử lý calcium hypochlorite 20 ppmTôm post 12 thả vào không nhiễm sau 16 ngày (nước không xử lý: 50% nhiễm)2022
Nước nuôi có bào tử, để nghỉ có sục khí 10 ngày, không có tômKhông nhiễm; nghỉ 5 ngày vẫn còn 10% nhiễm2022
−20 °C · 2 giờ
cấp đông làm bào tử ngừng phóng ống cực
75 °C · 1 phút
gia nhiệt làm bào tử bất hoạt
10 ngày
nước có bào tử để nghỉ, sục khí, hết lây
95,33%
mức giảm tối đa của formalin 200 ppm — chưa triệt để
Đọc kết quả cho đúng: các liều trên là thí nghiệm trên bào tử tinh sạch hoặc trong bể kính, không phải liều dùng ngoài ao. Ngoài ao, chất hữu cơ và bùn đáy làm giảm hiệu lực của chlorine và thuốc tím. Dùng hóa chất theo hướng dẫn kỹ thuật và quy định hiện hành.

Thức ăn có PCR dương tính EHP có nguy hiểm?

PCR phát hiện ADN, không phân biệt bào tử sống hay chết. Năm 2021, nhóm Mahidol cho tôm ăn 21 ngày hai mẫu thức ăn công nghiệp có PCR dương tính EHP. Tôm không nhiễm, trong khi nhóm cho ăn thức ăn trộn bào tử sống đều nhiễm. Thức ăn công nghiệp đã qua chế biến nhiệt từ 75 °C trong 60 giây trở lên được nhóm tác giả đánh giá là không có nguy cơ lây EHP.

Ngược lại, thức ăn tươi sống không qua nhiệt, như giun nhiều tơ hay nhuyễn thể tươi, vẫn có thể mang bào tử còn sống.

Người nuôi áp dụng thế nào

  1. Thức ăn tươi sống: hạn chế dùng. Nếu cần, chọn nguồn đã kiểm EHP và xử lý nhiệt hoặc cấp đông sâu (−20 °C ít nhất 2 giờ làm bào tử ngừng phóng ống cực trong phòng thí nghiệm).
  2. Nước cấp: xử lý chlorine trong ao lắng, hoặc để nước nghỉ, sục khí ít nhất 10 ngày khi trong ao lắng không có tôm, giáp xác mang mầm bệnh.
  3. Cải tạo ao: đừng trông vào formalin để diệt bào tử. Kết hợp phơi đáy, bón vôi và chất sát trùng có hiệu lực với bào tử, liều theo hướng dẫn cho ao thực tế.
  4. Đọc kết quả PCR cho đúng: PCR thức ăn công nghiệp dương tính chưa chắc có bào tử sống; hãy hỏi nhà sản xuất về quy trình gia nhiệt. Với con giống và tôm nuôi, PCR dương tính vẫn là tín hiệu nhiễm cần xử lý.
  5. Con giống sạch và xét nghiệm bằng quy trình đã thẩm định, như phân tích ở bài 3 của chuỗi.
Cần tư vấn quy trình phòng EHP cho ao của anh chị? Liên hệ đội kỹ thuật Thần Vương, hotline 0867 957 568.

Nguồn

  1. Aldama-Cano D.J., Sanguanrut P., Munkongwongsiri N., Ibarra-Gámez J.C., Itsathitphaisarn O., Vanichviriyakit R., Flegel T.W., Sritunyalucksana K., Thitamadee S. Bioassay for spore polar tube extrusion of shrimp Enterocytozoon hepatopenaei (EHP). Aquaculture 2018;490:156–161. DOI 10.1016/j.aquaculture.2018.02.039
  2. Munkongwongsiri N., Aldama-Cano D.J., Suebsing R., Thaiue D., Prasartset T., Itsathitphaisarn O., Sritunyalucksana K. Microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) spores are inactivated in 1 min at 75 °C. Aquaculture 2021;533:736178. DOI 10.1016/j.aquaculture.2020.736178
  3. Pattarayingsakul W., Munkongwongsiri N., Thitamadee S., Sritunyalucksana K., Aldama-Cano D.J. Shrimp microsporidian EHP spores in culture water lose activity in 10 days or can be inactivated quickly with chlorine. Aquaculture 2022;548:737665. DOI 10.1016/j.aquaculture.2021.737665
  4. Yuanlae S. và cs. Shrimp injection with dsRNA targeting the microsporidian EHP polar tube protein reduces internal and external parasite amplification. Scientific Reports 2024;14:4830. DOI 10.1038/s41598-024-55400-2
  5. Tangprasittipap A. và cs. The microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei is not the cause of white feces syndrome in whiteleg shrimp Penaeus (Litopenaeus) vannamei. BMC Veterinary Research 2013;9:139. DOI 10.1186/1746-6148-9-139
  6. Tourtip S., Wongtripop S., Stentiford G.D. và cs. Enterocytozoon hepatopenaei sp. nov. (Microsporida: Enterocytozoonidae), a parasite of the black tiger shrimp Penaeus monodon (Decapoda: Penaeidae): fine structure and phylogenetic relationships. J Invertebr Pathol 2009;102(1):21–29. DOI 10.1016/j.jip.2009.06.004 (cấu tạo bào tử).
  7. In vitro evaluation of two commercial biocides on EHP spore extrusion rate. Global Seafood Alliance – Responsible Seafood Advocate, 24/08/2020. Bài do một hãng thuốc thú y đồng thực hiện để thử sản phẩm của họ; chúng tôi chỉ dùng số liệu nhóm đối chứng.

Bài viết là bản tổng hợp và diễn giải bằng tiếng Việt của Thần Vương, không phải bản dịch; số liệu lấy từ bài gốc, phần quảng cáo sản phẩm của bài gốc đã được lược bỏ. Biểu đồ do Thần Vương vẽ lại từ số liệu, mô hình 3D do Thần Vương dựng; không sao chép hình và bảng của bài gốc.

Đọc thêm

Hỏi nhanh

Câu hỏi thường gặp về chủ đề này

Bài "EHP phóng ống cực thế nào? Bằng chứng từ phòng thí nghiệm và điều người nuôi áp dụng được" nói về vấn đề gì?

EHP xâm nhập tế bào gan tụy bằng ống cực; ĐH Mahidol đo được việc phóng ống cực của EHP (2018) và dùng nó để thử cách bất hoạt bào tử: −20 °C ≥2 giờ, 75 °C 45–60 giây, KMnO₄ 15 ppm, chlorine, cồn 20% chặn hoàn toàn; formalin 200 ppm giảm tối đa 95,33%; nước nuôi xử lý chlorine 20 ppm hoặc nghỉ 10 ngày hết lây (2022); thức ăn công nghiệp PCR dương tính đã qua nhiệt không lây (2021).

Bài viết này áp dụng cho đối tượng nuôi nào?

Tôm

Sản phẩm liên quan

Các sản phẩm gắn với chủ đề này

Product reference for GRO C30
TômThần Vương Blue

GRO C30

Cung cấp vitamin C giúp tăng sức đề kháng, giảm stress

Product reference for MIX 400
TômThần Vương Nutrition

MIX 400

Cung cấp khoáng, ổn định kiềm và pH

Product reference for AQUA PRO4000X
TômThần Vương Nutrition

AQUA PRO4000X

Vi sinh kiểm soát tảo và vi khuẩn có hại trong nước

Product reference for BACWAT New
TômThần Vương Nutrition

BACWAT New

Giải pháp vi sinh toàn diện cho ao nuôi siêu thâm canh

Đọc thêm

Các bài kỹ thuật liên quan

Xét nghiệm PCR nào bắt EHP chuẩn nhất? So sánh 6 bộ xét nghiệm của Đại học Arizona
Bài kỹ thuật•Tôm•10 tháng 11, 2026

Xét nghiệm PCR nào bắt EHP chuẩn nhất? So sánh 6 bộ xét nghiệm của Đại học Arizona

Nghiên cứu trên Scientific Reports (05/05/2026) so sánh trực tiếp 6 bộ real-time PCR phát hiện EHP: bốn bộ đạt độ nhạy 100%, hai bộ[...]

EHP sinh sôi ngay trong ao nuôi: vì sao phải kiểm soát từ con giống
Bài kỹ thuật•Tôm•10 tháng 11, 2026

EHP sinh sôi ngay trong ao nuôi: vì sao phải kiểm soát từ con giống

Dữ liệu đo bào tử EHP trong nước ao ở Thái Lan và Việt Nam: ở các trại Việt Nam được đo, nước cấp khá sạch nhưng bào tử trong ao tăn[...]

EHP làm mất bao nhiêu lợi nhuận? Kết quả khảo sát 145 trại tôm ở Ấn Độ
Bài kỹ thuật•Tôm•10 tháng 11, 2026

EHP làm mất bao nhiêu lợi nhuận? Kết quả khảo sát 145 trại tôm ở Ấn Độ

Khảo sát một năm ở bang Andhra Pradesh (Ấn Độ): 64% số trại nhiễm EHP, chi phí chuẩn bị ao tăng 15–28%, thiệt hại có thể vượt 20–30%[...]

Hỏi Thần Vương

Trợ lý kỹ thuật nuôi tôm & thủy sản

Xin chào Anh/Chị 👋

Mô tả vấn đề ao nuôi hoặc chọn câu hỏi bên dưới.